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幽门螺杆菌NCTC11639基因HPAA的克隆表达及鉴定
幽门螺杆菌(helicobacter pylori,Hp)是慢性胃炎和消化性溃疡的重要致病菌,并与胃腺癌和胃粘膜相关B细胞淋巴瘤的发生密切相关。如何有效控制Hp感染,一直为国内外学者所关注。目前临床上多采用抗生素治疗Hp感染,但Hp容易产生耐药性,导致抗生素治疗失效,并且Hp未能根除,大多数患者很快又旧病复发,因此开发疫苗被认为是控制Hp感染最有效的方法。但迄今为止,尚未开发出成功Hp的疫苗,筛选合适的抗原表位仍是目前Hp疫苗研究的热点。 Hp的主要粘附素为N乙酰神经氨酰乳糖结合原纤维样血凝素(Nacetylneuraminyllactosebinding haemagglutinin,NLBH),hpaA是其亚单位,并且作为核心组成部分,主要参与编码鞭毛鞘壳和外膜中的脂蛋白。hpaA在Hp感染过程中不可或缺,hpaA突变的Hp菌株无法在小鼠体内定植,目前hpaA的具体功能尚未阐明。本项研究旨在探讨hpaA蛋白作为抗Hp感染的候选疫苗的可行性,拟构建可高效表达hpaA的原核表达系统,并获得重组hpaA蛋白。
1 材料和方法
1.1 菌株与培养基 Hp标准株NCTC11639、大肠杆菌Top10及BL21来源于本实验室菌种库。重组大肠杆菌所用培养基为LB培养基。
1.2 实验试剂 细菌基因组提取试剂盒、质粒小量提取试剂盒、DNA Marker,一管式PCR反应体系及PCR产物纯化试剂盒,限制性内切酶BamH I和Hind III以及低分子量蛋白质Marker。
1.3 扩增及克隆 设计用于扩增hpaA的引物,并送交TaKaRa公司合成。
利用以上引物和一管式PCR反应体系,从提取到的Hp NCTC11639基因组中扩增hpaA。
扩增条件:盖温105℃,预热94℃ 10 min,(94℃ 30 s,50℃ 1 min,70℃ 2.5min)×35,最后70℃再延伸6 min。
扩增产物用PCR产物纯化试剂盒纯化后,连入T载体pGEMT,转入大肠杆菌Top10感受态细胞中,37℃在含有Xgal的平板上培养14 h,利用Amp抗性和蓝白斑筛选出白色重组菌落,微量PCR鉴定,挑取阳性菌落,提取重组质粒,双酶切鉴定,保存阳性克隆菌种,提取的质粒送交TaKaRa进行测序。从重组pGEMT中用Bam H I和Hind III,双酶切下hpaA,克隆入表达载体pGEX4T1中,转化入大肠杆菌BL21感受态细胞中,Amp抗性平板培养基上筛选阳性克隆,进行PCR及双酶切鉴定。重组大肠杆菌30℃下4 h,150 rpm,0.05 mM IPTG诱导表达,将产物进行SDSPAGE鉴定。
2 结果与分析
2.1 PCR扩增hpaA扩增出的hpaA片段长度符合预测,将PCR产物分别连入pGEMT中获得重组T载体,经测序证明为hpaA基因。
2.2 同源性比较 对测序结果分别与GeneBank上已公布的8株Hp的hpaA序列进行同源性比较,结果表明NCTC11639的hpaA基因同源性达到94.34%~96.72%。
2.3 hpaA的诱导表达从重组pGEMT克隆中切下hpaA,克隆入pGEX4T1中,转化大肠杆菌BL21,对阳性克隆进行双酶切和PCR鉴定,诱导表达,上清液经SDSPAGE鉴定。 结果表明GSThpaA为可溶性表达,重组蛋白主要存在于上清液中。
3 讨论
Hp与胃炎、消化性溃疡、胃腺癌及胃粘膜相关B细胞淋巴瘤等消化道疾病密切相关。目前Hp疫苗研究热点主要集中在尿素酶(Ure),毒力因子CagA和VacA,热休克蛋白60(Hsp60)等亚单位保护性抗原上。但Ure难以诱导出全面而稳定的保护性免疫应答;CagA和VacA变异较大,且CagA是否为Hp感染所必需还存在一定争议;Hsp60和人体自身蛋白有较高同源性,用Hsp60免疫小鼠只能获得局部保护性免疫应答,并且会导致小鼠肠胃炎,其作为疫苗的安全性和有效性尚需进一步验证。因此,仍需进行研究以筛选出更合适的Hp候选疫苗。
NLBH是Hp的主要粘附素之一,它能与多种胃上皮细胞表面成分如神经节苷脂(GM3)、硫酸脑苷脂(SLC)及层粘连蛋白上的唾液酸乳糖等结合,使Hp紧密粘附于胃上皮细胞,从而进一步发挥对胃粘膜的损伤作用。所有Hp菌株均有hpaA基因,并且其核苷酸序列高度保守。Hp感染患者血清中出现的hpaA抗体能与hpaA融合蛋白发生免疫反应,因此hpaA作为Hp疫苗的候选抗原非常可行。
本研究克隆并表达了幽门螺杆菌NCTC11639的hpaA基因,与Genbank上已经公布的Hp菌株hpaA序列进行对比,同源性达到94.34%~96.72%,表明hpaA具有较高的保守性。目前已成功构建了可高效表达hpaA的原核表达系统,拟分离纯化重组蛋白,利用临床阳性血清进行鉴定。